实验目的：
以原代培养的小鼠胎儿细胞为材料，学习动物细胞培养中最常用的消化法进行细胞传代培养的实验过程，为细胞纯化、冷冻保存、生长曲线的测定和细胞活性检查等实验奠定基础。 实验原理：
细胞在培养瓶长成致密单层后，已基本上饱和，为使细胞能继续生长，同时也使细胞数量扩大，就必须进行传代（再培养）。 传代培养也是一种将细胞种保存下去的方法，同时也是利用培养细胞进行各种实验的必经过程。悬浮型细胞传代培养直接分瓶就可以，而贴壁细胞需经消化后才能分瓶。 实验材料与设备：
超净工作台、CO2培养箱、倒置显微镜，培养箱、卡氏培养瓶、废液缸、酒精灯、吸管、滤膜。
Hanks液、D-Hanks液、胰蛋白酶、NaOH、1640培养基。 实验步骤：
1、将长满细胞的培养瓶中原来的培养液弃去，用2ml Hanks液清洗一次。 2、加入0.5—1ml 0.25％胰酶溶液，使瓶底细胞都浸入溶液中。
3、瓶口塞好橡皮塞，放在倒置镜下观察细胞。随着时间的推移，原贴壁的细胞逐渐趋于圆形，在还未漂起时将胰酶弃去（约需3min），加入10ml Hanks培养液终止消化。 观察消化也可以用肉眼，当见到瓶底发白并出现细针孔空隙时终止消化。一般室温消化时间约为1—3min。注意加Hanks液冲洗细胞时，动作要轻，以免把已松动的细胞冲掉。 4、加入5ml的培养液，用吸管吸取培养液将贴壁的细胞吹打成悬液，吹打勿用力过猛，以免伤害细胞。
5、将悬浮液分成等份接种到另外两到三瓶中，加培养液到3ml，塞好橡皮塞，置37℃下继续培养。每三天换液一次，观察贴壁生长情况。 思考题：
1．什么是细胞株？什么是细胞系？两者相同吗？
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